GB 23200.116-2019 食品安全国家标准
植物源性食品中90种有机磷类农药及其代谢物残留量的测定
气相色谱法
方法一 气相色谱双柱法
1范围
本标准规定了植物源性食品中90种有机磷类农药及其代谢物（参见附录A）残留量的气相色谱测定方法。
本标准适用于植物源性食品中90种有机磷类农药及其代谢物残留量的测定。
2规范性引用文件
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GB 2763食品安全国家标准 食品中农药最大残留xian量
GB/T 6682分析实验室用水规格和试验方法
3原理
试样用乙腈提取，提取液经固相萃取或分散固相萃取净化，使用带火焰光度检测器的气相色谱仪检测，根据双柱色谱峰的保留时间定性，外标法定量。
4试剂与材料
除非另有说明，在分析中仅使用分析纯的试剂，水为GB/T 6682规定的一级水。
4.1试剂
4.1.1乙腈（CH3CN，CAS 号：75-05-8）。
4.1.2丙酮（C3H6O，CAS号：67-64-1）：色谱纯。
4.1.3甲苯（C7 H8 ，CAS号：108-88-3）：色谱纯。
4.1. 4无水硫酸镁（MgSO4 ，CAS号：7487-88-9）。
4.1.5氯化钠（NaCI，CAS 号：7647-14-5）。
4.1.6乙酸钠（CH3COONa，CAS 号： 127-09-3）。
4.2溶液配制
乙腈-甲苯溶液（3+1，体积比） ：量取100 mL甲苯加入300 mL乙腈中，混匀。
4.3标准品
90种有机磷类农药及其代谢物标准品：参见附录A，纯度≥96%。
4.4标准溶液配制
4.4. 1标准储备溶液（1 0000 mg/L）：准确称取10 mg（精确至0. 1 mg）有机磷类农药及其代谢物各标准品，用丙酮溶解并分别定容到10 mL。标准储备溶液避光且低于-18℃保存，有效期一年。
4.4.2混合标准溶液（Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ和Ⅵ）：详见附录A，将90种有机磷类农药及其代谢物分成6个组分别准确吸取一定量的单个农药储备溶液于50 mL容量瓶中，用丙酮定容至刻度。混合标准溶液，避光0℃~4℃保存，有效期一个月。
4.5材料
4.5. 1固相萃取柱：石墨化炭黑填料（GCB）500 mg /氨基填料（NH2）500 mg，6 mL。
4.5.2乙二胺-N-丙基硅烷硅胶（PSA）：40μm ~60μm。
4.5.3十八烷基甲硅烷改性硅胶（C18）：40μm~60μm。
4.5.4陶瓷均质子：2 cm（长）×1 cm（外径）。
4.5.5微孔滤膜（有机相）： 0. 22 μm×25 mm。
5仪器和设备
5.1气相色谱仪：配有双火焰光度检测器 （FPD磷滤光片）。
5.2 分析天平：感量0.1 mg和0.01 g。
5.3高速匀浆机：转速不低于15 000 r/min.
5.4 离心机：转速不低于4200 r/min。
5.5组织捣碎机。
5.6 旋转蒸发仪。
5.7 氮吹仪，可控温。
5.8涡旋振荡器 。
6试样制备
6.1试样制备
蔬菜和水果的取样量按照相关标准规定执行，食用菌样品随机取样1 kg。样品取样部位按GB 2763的规定执行。对于个体较小的样品，取样后全部处理；对于个体较大的基本均匀样品，可在对称轴或对称面上分割或切成小块后处理；对于细长、扁平或组分含量在各部分有差异的样品，可在不同部位切取小片或截成小段后处理；取后的样品將其切碎，充分混匀，用四分法取样或直接放入组织捣碎机中捣碎成匀浆，放入聚乙烯瓶中。
取谷类样品500 g，粉碎后使其全部可通过425 μm的标准网筛，放入聚乙烯瓶或袋中。取油料作物、茶叶、坚果和调味料各500 g，粉碎后充分混匀，放入聚乙烯瓶或袋中。
植物油类搅拌均匀，放入聚乙烯瓶中。
6.2试样储存
将试样按照测试和备用分别存放。于-20℃~-16℃条件下保存。
7分析步骤
7.1 提取和净化
7.1.1 蔬菜、水果和食用菌
称取20g（精确到0.01g）试样于150mL烧杯中，加入40mL乙腈，用高速勾浆机15000r/min匀浆2 min，提取液过滤至装有5g~7 g氯化钠的100 mL具塞量简中，盖上塞子，剧烈振荡1 min，在室温下静置30 min。
准确吸取10mL上清液于100mL烧杯中，80℃水浴中氮吹蒸发近干，加入2mL丙酮溶解残余物，盖上铝箔，备用。
将上述备用液完quan转移至15mL刻度离心管中，再用约3mL丙酮分3次冲洗烧杯，并转移至离心管，最后定容至5.0 mL，涡旋0.5 min，用微孔滤膜（4.5.5）过滤，待测。
7.1.2油料作物和坚果
称取10g（精确到0.01g）试样于150mL烧杯中，加入20mL水，混匀后，静置30min，再加入50mL
乙腈，用高速匀浆机15 000 r/min匀浆2 min，提取液过滤至装有5 g~7 g氯化钠的100 mL具塞量简中，盖上塞子，剧烈振荡1 min，在室温下静置30 min。
准确吸取8 mL上清液于15 mL刻度离心管中，加入900 mg无水硫酸镁、150 mg PSA、150 mg C18，涡旋0.5 min，4200 r/ min离心5 min，准确吸取5 mL上清液加入到10 mL刻度离心管中，80℃水浴中氮吹蒸发近干，准确加入1. 00 mL丙酮，涡旋0. 5 min，用微孔滤膜（4.5.5）过滤，待测。
7.1.3谷物
称取10g（精确到0.01g）试样于150mL具塞锥形瓶中，加入20mL水浸润30min，加入50mL乙
腈，在振荡器上以转速为200r/min振荡30min，提取液过滤至装有5g~7g氯化钠的100mL具塞量筒中，盖上塞子，剧烈振荡1min，在室温下静置30min。
准确吸取10 mL上清液于100 mL烧杯中，80℃水浴中氮吹蒸发近干，加入2 mL丙酮溶解残余物，盖上铝箔，备用。
将上述溶液完quan转移至10.0mL刻度试管中，再用5mL丙酮分3次冲洗烧杯，收集淋洗液于刻度试管中，50℃水浴氮吹蒸发近干，准确加入2.00mL图酮，涡旋0.5 min， 用微孔滤膜（4.5.5）过滤，待测。
7.1. 4茶叶和调味料
称取5 g（精确到0.01 g）试样于150 mL烧杯中，加入20mL水浸润6min，加入50 mL乙腈，用高速匀浆机15000 r/min高速勾浆2 min，提取液过滤至装有5 g~7g氯化钠的100mL具塞量简中，盖上塞子，剧烈振荡1min，在室温下静置30min。
准确吸取10mL上清液于100mL烧杯中，80℃水浴中氮吹蒸发近干，加入2mL乙腈-甲苯溶液（3+ 1，体积比）溶解残余物，街净化。
将固相萃取柱（4.51）用5 mL乙腈-甲苯溶液（4.2）预淋洗。当液面到达柱筛板顶部时，立即加入上述待净化溶液，用100 mL茄型瓶收集洗脱液，用2 mL乙脂-甲苯溶液（4.2）涮洗烧环后过柱，并重复一次。再用15 mL乙腈-甲苯溶液（4.2）洗脱柱子收集的洗脱液于40℃水浴中旋转蒸发近干，用5 mL丙酮冲洗茄型瓶并转移到10 ml离心管中，50℃水浴中氮吹蒸发近干，准确加入1.00 mL丙酮，涡旋混匀，用微孔滤膜（4.5. 5）过滤，待测。
7.1.5植物油
称取3g（精确至0.01 g）试样于50 mL塑料离心管中，加入5 mL水、15mL乙腈，并加入6 g无水硫酸镁、1.5g醋酸钠及1颗陶瓷均质子，剧烈振荡1 min，4200r/min离心5min。
准确吸取8 mL上清液到内有900 mg无水硫酸铁、150 mg PSA、150mgC18的15 mL离心管中，涡旋0. 5 min，4 200 r/min 离心5 min。准确吸取5 mL上清液放入10mL刻度离心管中，80℃水浴中氮吹蒸发近干，准确加入1. 00mL丙酮，涡旋0.5 min，用微礼滤膜（4.5.5）过滤，待测。
7.2 测定
7.2. 1仪器参考条件
a） 色谱柱：
A柱：50%聚苯基甲基硅氧烷石英毛细管柱，30 m×0.53 mm（内径）× 1.0μm，或相当者；
B柱：聚苯基甲基硅氧烷石英毛细管柱，30 m×0.53 mm（内径）×1.5μm，或相当者；
b）色谱柱温度： 150℃保持2 min，然后以8℃/min程序升温至210℃ ，再以5℃/min升温至250℃，保持15 min；
c） 载气：氮气，纯度≥99.999% ，流速为8.4 mL/ min；
d） 进样口温度：250℃；
e） 检测器温度：300℃；
f） 进样量：1μL；
g） 进样方式：不分流进样；
h） 燃气：氢气，纯度≥99. 999% ，流速为80 mL/ min；
助燃气：空气，流速为110 mL/ min。
7.2.2标准曲线
将混合标准中间溶液用丙酮稀释成质量浓度为0. 005 mg/L、0. 01 mg/L、0. 05 mg/L、0.1 mg/L和1 mg/L的系列标准溶液，参考色谱条件测定。以农药质量浓度为横坐标、色谱的峰面积积分值为纵坐标，绘制标准曲线。
7.2.3 定性及定量
7.2.3.1定性测定
以目标农药的保留时间定性。被测试样中目标农药双柱上色谱峰的保留时间与相应标准色谱峰的保留时间相比较，相差应在±0.05 min之内。
7.2.3.2定量测定
以外标法定量。
7.3 试样溶液的测定
将混合标准工作溶液和试样溶液依次注入气相色谱仪中，保留时间定性，测得目标农药色谱峰面积，根据式（1） ，得到各农药组分含量。待测样液中农药的响应值应在仪器检测的定量测定线性范围之内，超过线性范围时，应根据测定浓度进行适当倍数稀释后再进行分析。
7.4平行试验
按7.1~7.3的规定对同一试样进行平行试验测定。
7.5 空白试验
除不加试料外，按7. 1~7.4的规定进行平行操作。
8结果计算
试样中被测农药残留量以质量分数ω计，单位以毫克每千克（mg/kg）表示，按式（1）计算。
式中：
ω——样品中被测组分含量，单位为毫克每千克（mg/kg）；
V1——提取溶剂总体积，单位为毫升（mL）；
V2——提取液分取体积，单位为毫升（mL）；
V3——待测溶液定容体积，单位为毫升（mL）；
A——待测溶液中被测组分峰面积；
As——标准溶液中被测组分峰面积；
m——试样质量，单位为克（g）；
ρ——标准溶液中被测组分质量浓度，单位为毫克每升（mg/L）。
计算结果应扣除空白值，计算结果以重复性条件下获得的2次独立测定结果的算术平均值表示，保留2位有效数字。当结果超过1 mg/kg时，保留3位有效数字。
9精密度
在重复性条件下，获得的2次独立测试结果的绝对差值不得超过重复性限（r），参见附录B.
在再现性条件下，获得的2次独立测试结果的绝对差值不得超过再现性限（R），参见附录B.
10 其他
本标准方法各农药组分定量限参见附录C中的表C.1.
11 色谱图
色谱图见图1~图6，质量浓度均为0. 1 mg/L标准溶液。
方法二气相色谱单柱法
12 范围
同方法一。
13规范性引用文件
同方法一。
14 原理
试样用乙腈提取，提取液经固相萃取或分散固相萃取净化，使用带火焰光度检测器的气相色谱仪检测，根据色谱峰的保留时间定性，外标法定量。
15试剂和材料
同方法一。
16 仪器设备
16.1气相色谱仪：配有火焰光度检测器 （FPD磷滤光片），毛细管进样口。
16.2除气相色谱仪外，其余同方法一。
17试样制备
同方法一。
18 测定步骤
18. 1提取和净化
同方法一。
18.2 测定
18.2. 1仪器参考条件
色谱柱：50%聚苯基甲基硅氧烷石英毛细管柱，30 m×0. 53 mm（内径） ×1. 0 μm，或相当者。
18.2.2标准曲线
同方法一。
18.2.3定性及定量
18.2.3. 1定性测定
以目标农药的保留时间定性。被测试样中目标农药色谱峰的保留时间与相应标准色谱峰的保留时间相比较，相差在±0.05 min之内，需更换不同极性色谱柱再次确认或质谱定性。
18.2.3.2定量测定
同方法一。
18.2. 4平行试验
同方法一。
18.2.5空白试验
同方法一。
19结果计算
同方法一。
20精密度
同方法一。
21色谱图
色谱图见方法一中A柱色谱图。
